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Base Excision Repair01:54

Base Excision Repair

25.2K
One of the common DNA damages is the chemical alteration of single bases by alkylation, oxidation, or deamination. The altered bases cause mispairing and strand breakage during replication. This type of damage causes minimal change to the DNA double helix structure and can be repaired by the base excision repair (BER) pathways. BER corrects damaged DNA sequences by removing the damaged base and restoring the original base sequence using the complementary strand as a template.
The first step of...
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Aceleración de la ingeniería de aptamer post-SELEX utilizando la digestión de la exonucleasa

Juan Canoura1, Haixiang Yu1, Obtin Alkhamis1

  • 1Department of Chemistry and Biochemistry, Florida International University, 11200 Southwest Eighth Street, Miami, Florida 33199, United States.

Journal of the American Chemical Society
|December 30, 2020
PubMed
Resumen
Este resumen es generado por máquina.

Un nuevo método que utiliza exonucleasas evalúa rápidamente la afinidad de unión del aptamer, mejorando la ingeniería del aptamer. Esta técnica mejora la selección de aptamer para objetivos específicos como la adenosina, lo que permite el desarrollo de biosensores sensibles.

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Área de la Ciencia:

  • Biotecnología
  • Biología molecular
  • Química analítica

Sus antecedentes:

  • La Evolución Sistemática de Ligandos por Enriquecimiento Exponencial (SELEX) se utiliza para aislar aptameros, pero la identificación de secuencias óptimas con alta afinidad y especificidad es un desafío.
  • Los métodos de ingeniería de aptamer post-SELEX existentes a menudo tienen limitaciones, que incluyen sesgo, tasas de éxito variables y la necesidad de equipos especializados.

Objetivo del estudio:

  • Desarrollar un ensayo generalizable, rápido y libre de etiquetas para interrogar las propiedades de unión de los aptameros.
  • Diseñar aptameros con características de unión mejoradas, mejorando específicamente la afinidad y la especificidad de las moléculas objetivo.
  • Demostrar la aplicabilidad del método desarrollado tanto para los aptameros de pequeñas moléculas como para los que se unen a proteínas.

Principales métodos:

  • Se utilizó la exonucleasa III y la exonucleasa I para analizar las propiedades de unión de los aptameros mediante el monitoreo de los cambios en la cinética de la digestión tras la unión del ligando.
  • Se aplicó el ensayo a un aptamer de ADN que se une a la ocratoxina y sus mutantes para correlacionar la unión del ligando con la cinética de la digestión de la exonucleasa.
  • Diseñó un aptamer de ADN con unión indiscriminada a ATP, ADP, AMP y adenosina mediante la detección de mutantes e identificación de aptamers específicos de adenosina de alta afinidad.

Principales resultados:

  • La unión de ligandos alteró la cinética de la digestión de la exonucleasa de una manera que se correlacionó estrechamente con la afinidad aptamer-ligando.
  • Identificó dos aptameros de alta afinidad que se unen específicamente a la adenosina de una biblioteca de mutantes.
  • Desarrolló un sensor basado en aptamer electroquímico utilizando los aptamers de ingeniería, logrando un límite de detección de 1 μM para la adenosina en el suero al 50%.

Conclusiones:

  • El ensayo basado en exonucleasa desarrollado es un método generalizable y eficaz para caracterizar las afinidades de unión aptamer-ligando.
  • Este enfoque facilita la ingeniería de aptameros con propiedades de unión mejoradas, adecuadas para diversas aplicaciones, incluida la biosensorización.
  • El método es adaptable para el cribado de alto rendimiento y se puede aplicar a aptámeres de ADN de diversas secuencias, estructuras y longitudes.