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Updated: Sep 10, 2025

An Isolated Semi-intact Preparation of the Mouse Vestibular Sensory Epithelium for Electrophysiology and High-resolution Two-photon Microscopy

An Isolated Semi-intact Preparation of the Mouse Vestibular Sensory Epithelium for Electrophysiology and High-resolution Two-photon Microscopy

Published on: June 13, 2013

Los cambios de capacitancia transitorios registrados en las células ciliadas vestibulares de tipo I son producidos

Paolo Spaiardi^1,2,3, Roberta Giunta¹, Giorgio Rispoli⁴

¹Department of Brain and Behavioural Sciences, University of Pavia, Pavia, Italy.

The Journal of physiology

|August 25, 2025

Resumen

Las células ciliadas vestibulares de tipo I no liberan neurotransmisores transitoriamente. En cambio, un gran cambio transitorio en la capacidad de la membrana celular en estas células se genera por el encierro de canales de potasio específicos, no por exocitosis.

Área de la Ciencia:

La neurociencia
Biología celular
Biología sensorial

Sus antecedentes:

Las células ciliadas vestibulares (tipos I y II) detectan los movimientos de la cabeza y señalan a las neuronas a través de la exocitosis del glutamato.
Esta exocitosis es dependiente del calcio (Ca2+) y ocurre a través de los canales CaV1.3.
Estudios anteriores mostraron diferencias en la exocitosis y un cambio único en la capacidad de la membrana (ΔC_m) en las células ciliadas de tipo I.

Objetivo del estudio:

Para dilucidar la naturaleza biofísica de la gran transición ΔC_m observada en las células ciliadas vestibulares de tipo I.
Para determinar si este transitorio ΔC_m está relacionado con la exocitosis del neurotransmisor u otros mecanismos celulares.
Investigar el papel de los canales iónicos específicos y las propiedades de la hendidura sináptica en la señalización de las células ciliadas de tipo I.

Principales métodos:

Registros electrofisiológicos de cambios en la capacidad de la membrana celular (ΔC_m) en las células ciliadas vestibulares.
El uso de quelantes de calcio (EGTA) para evaluar la dependencia del calcio.
Utilizando protocolos de pinza de tensión para estudiar la cinética y la conductancia de los canales iónicos.
Examen de las células ciliadas de ratones salvajes y modificados genéticamente (Ca_V1.3^-/-, Caspr^-/-).

Principales resultados:

El transitorio ΔC_m en las células ciliadas de tipo I fue insensible a la quelación de calcio intracelular, descartando la exocitosis dependiente de calcio.
La amplitud transitorio ΔC_m está fuertemente correlacionada con la activación de la conductividad K⁺ de baja tensión activada hacia afuera (G_K,L), única para las células de tipo I.
Los cambios en los pasos de voltaje alteraron el signo y la cinética del transitorio ΔC_m, consistente con el movimiento de carga durante el encierro del canal G_K,L.
El transitorio ΔC_m se redujo en ratones Caspr^-/- con hendiduras sinápticas más amplias, lo que indica su dependencia de la resistencia a la hendidura sináptica.

Conclusiones:

El ΔC_m transitorio en las células ciliadas vestibulares de tipo I no es causado por la exocitosis del neurotransmisor.
Este fenómeno se genera por el encierro de la conductividad de rectificación hacia afuera K⁺ (G_K,L) en las células ciliadas de tipo I.
Los hallazgos aclaran los mecanismos de señalización en las células ciliadas vestibulares, relevantes para comprender los trastornos vestibulares y los efectos de los medicamentos.

Palabras clave:

Capacidad de la membrana celular La exocitosis corriente de entrada célula capilar el vestibular

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