Jove
Visualize
お問い合わせ
JoVE
x logofacebook logolinkedin logoyoutube logo
JoVEについて
概要リーダーシップブログJoVEヘルプセンター
著者向け
出版プロセス編集委員会範囲と方針査読よくある質問投稿
図書館員向け
推薦の声購読アクセスリソース図書館諮問委員会よくある質問
研究
JoVE JournalMethods CollectionsJoVE Encyclopedia of Experimentsアーカイブ
教育
JoVE CoreJoVE BusinessJoVE Science EducationJoVE Lab Manual教員リソースセンター教員サイト
利用規約
プライバシーポリシー
ポリシー

関連する概念動画

CRISPR/Cas9 Genome Editing01:28

CRISPR/Cas9 Genome Editing

2.1K
The CRISPR-Cas system serves as a bacterial defense mechanism against invading genetic elements such as viruses and plasmids, forming the foundation for its adaptation as a powerful genome-editing tool. Originally discovered in prokaryotes, this system has been repurposed to revolutionize genetic engineering across a wide range of organisms, including plants, animals, and humans. The core component, Cas9, is an endonuclease derived from Streptococcus pyogenes, capable of introducing...
2.1K
Conservative Site-specific Recombination and Phase Variation02:53

Conservative Site-specific Recombination and Phase Variation

6.9K
Because the DNA segments are cut and reorganized in a direction-specific manner, site-specific recombination has emerged as an efficient genetic engineering technique. Flippase and Cyclization recombinases or Flp and Cre, respectively, are two members of the tyrosine recombinase family derived from bacteriophages, that are used to mediate site-specific DNA insertions, deletions, and targeted expression of proteins in mammalian cell lines.
The recognition sites for Cre recombinase called LoxP...
6.9K
CRISPR01:59

CRISPR

58.2K
Genome editing technologies allow scientists to modify an organism’s DNA via the addition, removal, or rearrangement of genetic material at specific genomic locations. These types of techniques could potentially be used to cure genetic disorders such as hemophilia and sickle cell anemia. One popular and widely used DNA-editing research tool that could lead to safe and effective cures for genetic disorders is the CRISPR-Cas9 system. CRISPR-Cas9 stands for Clustered Regularly Interspaced...
58.2K
DNA-only Transposons02:57

DNA-only Transposons

17.6K
DNA-only transposons are called autonomous transposons since they code for the enzyme transposase that is required for the transposition mechanism. Insertion of transposons can alter gene functions in multiple ways. They can mutate the gene, alter gene expression by introducing a novel promoter or insulator sequence, introduce new splice sites, and change the mRNA transcripts produced, or remodel chromatin structure.
The donor site from where the transposon is excised is either degraded or...
17.6K
CRISPR and crRNAs02:53

CRISPR and crRNAs

19.3K
Bacteria and archaea are susceptible to viral infections just like eukaryotes; therefore, they have developed a unique adaptive immune system to protect themselves. Clustered regularly interspaced short palindromic repeats and CRISPR-associated proteins (CRISPR-Cas) are present in more than 45% of known bacteria and 90% of known archaea.
The CRISPR-Cas system stores a copy of foreign DNA in the host genome and uses it to identify the foreign DNA upon reinfection. CRISPR-Cas has three different...
19.3K

こちらも読む

関連記事

共著者、ジャーナル、引用グラフによってこの研究に関連する記事。

並び替え
Same author

Engineering human PEG10-based nanoparticles for RNA self-packaging, delivery and cancer therapy.

Nature communications·2026
Same author

Quaternary Carbon Centers via Electrochemical Direct Dehydroxylative Alkylation.

Angewandte Chemie (International ed. in English)·2025
Same author

Programmable editing of primary MicroRNA switches stem cell differentiation and improves tissue regeneration.

Nature communications·2024
Same author

Auto-inducible synthetic pathway in E. coli enhanced sustainable indigo production from glucose.

Metabolic engineering·2024
Same author

Benefits of Hepatitis C Viral Eradication: A Real-World Nationwide Cohort Study in Taiwan.

Digestive diseases and sciences·2024
Same author

RNA-guided genome engineering: paradigm shift towards transposons.

Trends in biotechnology·2024

関連する実験動画

Updated: Feb 24, 2026

A Simple and Efficient Approach to Construct Mutant Vaccinia Virus Vectors
09:16

A Simple and Efficient Approach to Construct Mutant Vaccinia Virus Vectors

Published on: October 30, 2016

11.9K

CRISPR関連トランスポゾンを用いたプログラム可能なウイルスベクター工学およびプライム編集

Quyen T Dang1, Chin-Wei Chang1, Pin-Yan Chen1

  • 1Department of Chemical Engineering, National Tsing Hua University, Hsinchu 300044, Taiwan.

Nucleic acids research
|February 23, 2026
PubMed
まとめ

SHOT 2.0は、大腸菌における柔軟なバクミド工学のための新しいCRISPR関連トランスポゾンプラットフォームです。このツールは、様々な細胞タイプにおける効率的な遺伝子送達とプライム編集を可能にし、バキュロウイルス応用を拡大します。

キーワード:
CRISPRトランスポゾンバキュロウイルス遺伝子工学プライム編集遺伝子送達

さらに関連する動画

A Protocol for the Production of Integrase-deficient Lentiviral Vectors for CRISPR/Cas9-mediated Gene Knockout in Dividing Cells
10:42

A Protocol for the Production of Integrase-deficient Lentiviral Vectors for CRISPR/Cas9-mediated Gene Knockout in Dividing Cells

Published on: December 12, 2017

16.3K
Generating Recombinant Avian Herpesvirus Vectors with CRISPR/Cas9 Gene Editing
12:21

Generating Recombinant Avian Herpesvirus Vectors with CRISPR/Cas9 Gene Editing

Published on: January 7, 2019

14.2K

関連する実験動画

Last Updated: Feb 24, 2026

A Simple and Efficient Approach to Construct Mutant Vaccinia Virus Vectors
09:16

A Simple and Efficient Approach to Construct Mutant Vaccinia Virus Vectors

Published on: October 30, 2016

11.9K
A Protocol for the Production of Integrase-deficient Lentiviral Vectors for CRISPR/Cas9-mediated Gene Knockout in Dividing Cells
10:42

A Protocol for the Production of Integrase-deficient Lentiviral Vectors for CRISPR/Cas9-mediated Gene Knockout in Dividing Cells

Published on: December 12, 2017

16.3K
Generating Recombinant Avian Herpesvirus Vectors with CRISPR/Cas9 Gene Editing
12:21

Generating Recombinant Avian Herpesvirus Vectors with CRISPR/Cas9 Gene Editing

Published on: January 7, 2019

14.2K

科学分野:

  • 分子生物学
  • 遺伝子編集
  • ウイルス学

背景:

  • バキュロウイルスは、組換えタンパク質発現および遺伝子送達に広く使用されています。
  • 現在のバクミド工学法は、柔軟性とプログラム可能性が欠けています。
  • CRISPR関連トランスポゾンシステムは、高度な遺伝子操作の可能性を提供します。

研究 の 目的:

  • 柔軟でプログラム可能なバクミド工学のための最適化されたCRISPR関連トランスポゾンプラットフォームを開発すること。
  • 大規模DNA貨物を特定のバクミド遺伝子座に効率的に組み込むことを可能にすること。
  • 遺伝子編集のための高度なバキュロウイルスベクター構築のためのプラットフォームの有用性を実証すること。

主な方法:

  • RNAガイドバクミド編集のための大腸菌におけるCRISPR関連トランスポゾンシステムであるSHOT 2.0の開発。
  • バクミド遺伝子座(v-cath、ODVe56)への大規模DNAペイロード(≥14 kb)の部位特異的組み込み。
  • プライムエディター(PE5max)をコードするオールインワンバキュロウイルス(v-cath、ODVe56)の構築と試験。
  • HEK293T細胞、誘導多能性幹細胞(iPSC)、および肝がん細胞におけるプライム編集効率の評価。

主要な成果:

  • SHOT 2.0は、定義されたバクミド遺伝子座への大規模DNA貨物(≥14 kb)の部位特異的組み込みを可能にします。
  • ODVe56遺伝子座への組み込みは、連続的なウイルス継代中のトランスジーン安定性を大幅に向上させます。
  • このシステムはBac-to-Bac®ワークフローと互換性があり、二重遺伝子挿入を可能にします。
  • ベクター媒介プライム編集は、HEK293T細胞で最大85.6%、iPSCおよび肝がん細胞で37.1%の効率を達成しました。

結論:

  • SHOT 2.0は、遺伝子編集のための柔軟なプラットフォームを提供するバキュロウイルス工学ツールボックスを大幅に拡張します。
  • このプラットフォームは、遺伝子送達を含む多様な応用のため高度なバキュロウイルスベクターの作成を容易にします。
  • iPSCおよびがん細胞を含む、挑戦的な細胞タイプを含む様々な細胞タイプにおける堅牢なプライム編集能力を実証しました。