协同Arg-C Ultra和Lys-C消化用于定量蛋白质组学
Vyas Pujari1,2,3, Joseph Crapse1,2, Connor Nisbet1,2,4
1Department of Molecular Biology, Princeton University, Princeton, NJ, USA.
bioRxiv : the preprint server for biology
|August 12, 2025
概括
这项研究引入了一种使用Lys-C和Arg-C超酶的新序列消化方法,以改善猎枪蛋白质组学. 这种增强的消化增加了蛋白质的量化和可重复性,无论是在无标签和多重工作流程中.
科学领域:
- 蛋白质组学是指蛋白质组学.
- 酶性消化 酶性消化
- 质谱测量质量谱测量
背景情况:
- 完整的酶性消化对于猎枪蛋白质组学至关重要.
- 不完整的消化限制了蛋白质组的覆盖范围,并增加了变异性.
- 现有的方法难以在氨酸残留物上完全裂开.
研究的目的:
- 描述Arg-C Ultra和Lys-C蛋白酶,以实现最佳的顺序消化.
- 开发一个强大的顺序消化工作流程,与无标签DIA和TMTpro多重复合兼容.
- 为了改善蛋白质组覆盖范围和蛋白质组学中的定量复制性.
主要方法:
- 使用染色基质和猎枪蛋白质学,对Arg-C Ultra和Lys-C进行系统的表征.
- 优化反应条件,包括温度,pH值和还原剂.
- 开发和应用一个连续的Lys-C/Arg-C超级消化协议.
主要成果:
- 在降温条件下,Arg-C Ultra在室温下是最佳的;Lys-C在37°C处是活跃的,但对减温剂敏感.
- 1毫米的TCEP保留了TMTpro的完整性,同时使Arg-C Ultra活动.
- 开发的协议实现了>99%的氨酸和95%的氨酸裂变效率.
- 量化蛋白质增加了6% (无标签DIA) 和11% (TMTpro).
结论:
- 一个协同的Lys-C/Arg-C Ultra消化策略增强了蛋白质覆盖范围.
- 该协议兼容无标签的DIA和TMTpro多重复制.
- 这种方法为蛋白质组学提供了出色的定量可重现性.
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