使用CRISPR-Cas12a在与模块化压缩集成的指触控微流体装置上超敏感检测多种食源性病原体
Dong Hyun Han1, Sang Yong Lee2, Yurim Kim1
1Department of Bio and Brain Engineering, Korea Advanced Institute of Science and Technology (KAIST), 291 Daehak-ro, Yuseong-gu, Daejeon 34141, Republic of Korea.
Analytical chemistry
|December 19, 2025
概括
一种新的微流体装置使用复合酶聚合酶放大 (RPA) 和CRISPR-Cas12a来快速检测食源性病原体. 这种可重复使用的系统为提高食品安全提供了灵敏,用户友好的临床检测.
科学领域:
- 生物技术是生物技术.
- 微流体学 微流体学
- 分子诊断学 分子诊断
背景情况:
- 食物传播病原体对全球健康和经济构成重大风险.
- 现有的检测方法可能是缓慢的,昂贵的,或容易交叉污染.
- 对于食品安全,需要快速,灵敏和用户友好的诊断工具.
研究的目的:
- 开发和验证一种新的微流体平台,用于检测食品传播病原体.
- 将复合酶聚合酶放大 (RPA) 与CRISPR-Cas12a技术相结合,以提高灵敏度和特异性.
- 设计一个可重复使用和可重新配置的指控微流体装置,配备模块化加压 (MoPP),以提高可用性和多重复合能力.
主要方法:
- 开发了一种采用模块化压力 (MoPP) 的指控微流体装置.
- 整合RPA和CRISPR-Cas12a系统与特定目标CRISPRRNAs (crRNAs) 的整合.
- 优化RPA原料和crRNA序列用于检测大肠杆菌O157:H7,沙门氏菌和单细胞菌Listeria.
主要成果:
- 与MoPP集成的微流体装置证明了可重复使用性和减少交叉污染.
- 通过RPA-CRISPR-Cas12a方法,在添加剂的牛奶样本中,实现了三种主要的食源性病原体的低检测极限 (LOD).
- 对大肠杆菌O157:H7的LOD为1.62CFU/mL,对沙门氏菌的LOD为1.84CFU/mL,对单细胞菌的LOD为1.01CFU/mL.
结论:
- 开发的微流体RPA-CRISPR-Cas12a平台是用于检测食品传播病原体的灵敏和用户友好的工具.
- MoPP提高了设备的可重复使用性,并使灵活的多重测试工作流程成为可能.
- 这项技术有望在整个食品供应链中进行临床检测,改善食品安全监测.


